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    CO-IP實驗操作及注意事項

    發(fā)布時間: 2024-01-16  點擊次數(shù): 517次

    原理:

     CO-IP(免疫共沉淀)是以抗體和抗原之間的專一性作用為基礎的用于研究蛋白質(zhì)相互作用的經(jīng)典方法。如果用蛋白質(zhì)X的抗體免疫沉淀X,那么與X結合的蛋白質(zhì)Y也能沉淀下來。

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     從原理示意圖可見,免疫共沉淀利用抗原(紅三角)與蛋白 (藍圓柱) 的特異性結合,再通過連接著樹脂的抗體 (紫圓球) 去識別抗原,從細胞裂解液或者蛋白混合物中捕獲與抗原相作的蛋白。之后通過進一步洗脫,獲取抗原-蛋白復合物,再對蛋白進行檢測。

    一、蛋白樣品制備

    裂解提取出免疫沉淀需要的蛋白樣品,以下為HEK293T細胞樣品的處理方法,其余的樣品制備方法參閱相關文獻。

    單層貼壁細胞總蛋白的提取:

    1、收集細胞:10cm細胞培養(yǎng)板上,每板細胞加1ml ,4℃預冷的PBS(0.01 M pH7.2~7.3)。反復沖洗把所有掛壁細胞洗下來轉移到1.5ml離心管內(nèi) 離心:3400 rpm 2min。

    2、清洗細胞:棄上清,(大槍頭套小槍頭)避免吸到沉淀。再加1mPBS,垂懸吹打;離心:rpm3400 2min。棄上清,將PBS吸凈后-80℃保存。

    3、準備Protein A agarose,用PBS 洗兩遍珠子,然后用PBS配制成50%濃度,建議減掉槍尖部分,避免在涉及瓊脂糖珠的操作中破壞瓊脂糖珠。

    4、裂解蛋白,收集的細胞中加入1000ul細胞裂解液10ul蛋白酶抑制劑,冰上靜置30min,每10min震蕩混勻一次,4℃,12000rpm離心10min,收集上清液。

    5、 每1 ml 總蛋白中加入100 μl Protein A瓊脂糖珠(50%),4℃搖晃1 h以去除非特異性雜蛋白,降低背景。

    6、4℃,14000g離心15min,將上清轉移到一個新的離心管中標號Input,留Protein A珠子,標號IP。

    7、變性以及還原蛋白

    室溫溶解蛋白上樣緩沖液(5×),按照4 uL蛋白樣品+1 ul (5×)的比例混合,IP組加入50ul蛋白上樣緩沖液,在蛋白樣品中加入含SDS(保證樣品中的所有蛋白帶電荷一致)的上樣緩沖液,100℃加熱煮沸,以充分變性蛋白。冰上驟冷,上樣到SDS-PAGE膠加樣孔即可。

    二、經(jīng)過SDS-PAGE分離樣品

    膠的選擇與制備(根據(jù)目的蛋白的大小,選擇合適的分離膠的濃度)

    1、凝膠的制備:根據(jù)目的蛋白的大小來選擇合適濃度的分離膠。目的蛋白小于20 k Da選擇12%~15%的分離膠;大于20 k Da選擇10%的分離膠, 濃縮膠一般固定為5%。

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    2、上樣加入蛋白樣品,每孔加上樣液20ug,留一孔加預染的marker。

    3、加滿電泳緩沖液,蓋上槽蓋,接通電源,先用70V恒壓電泳,約30min,當指示劑溴酚藍進入分離膠后改用90V恒壓電泳,當指示劑到達距凝膠下端約0.5cm處時關閉電源,取出膠板。

    注意:上樣時間盡量短,避免樣品擴散,但也不能過快避免樣品溢出而造成相鄰加樣孔的交叉污染,未加樣的孔中加入等量的樣品緩沖液

    三、轉膜、封閉、一抗、二抗孵育

    將蛋白凝膠中的蛋白,通過電流作用轉移到轉印膜上。

    1、將剪好的PVDF膜用無水甲醇潤濕30秒以上,然后用dd H2O漂洗2min,浸泡于轉移緩沖液中5min后開始后續(xù)操作。

    2、裝配轉膜三明治結構(在轉移緩沖液中制備三明治可以避免氣泡的產(chǎn)生)

    黑面(負極)→海綿墊→3層濾紙→凝膠→轉印膜→3層濾紙→海綿墊→紅面(正極),每層之間不能有氣泡。然后將三明治轉移至電泳槽中,黑面對黑面。

    3、加入轉膜緩沖液,將電轉儀置于冰水中,300mA恒流轉膜60-90min。

    4、轉膜結束后,使用5% 脫脂奶粉室溫封閉1h。

    5、選擇合適的一抗孵育,室溫搖動1h。

    6、孵育二抗,4℃孵育2h或室溫(22-25℃)搖動孵育1h。(抗體查相應說明書確定稀釋倍數(shù))

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    四、顯影

    1、配置稀釋液,將A液和B液按照(1:1)混合。

    2、從TBST緩沖液中取出膜,去除膜上的多余緩沖液,但不要讓膜干燥。

    3、將有蛋白的一面朝上平整的鋪在一張紙板上,加上配好的工作稀釋液。用量以覆蓋住膜為基準。

    4、將膜與工作稀釋液孵育1-5min,確保整個表面覆蓋。

    5、去除多余的液體,用保鮮膜包好PVDF膜,暗室中X膠片感光顯影定影。

    注意:

    1、一抗、二抗的稀釋度、作用時間和溫度對不同的蛋白要經(jīng)過預實驗確定最佳條件。

    2、顯色液必須新鮮配置使用,最后加入 H2O2。

    3、DAB 有致癌的潛在可能,操作時要小心仔細。

    五、注意事項

    1、上樣時,要迅速,避免樣品擴散,也不能讓樣品溢出而造成相鄰加樣孔的交叉污染。

    2、全程操作中戴手套,不要用手觸膜。

    3、如檢測小于20kD的蛋白應用0.2µm的膜,并可省略轉移時的平衡步驟。

    4、 某些抗原和抗體可被Tween-20 洗脫,此時可用1.0% BSA代替Tween-20。

    5、如要同時檢測大分子量和小分子蛋白,最好用梯度膠分離蛋白。

    6、曝光時。去除膜上的多余緩沖液,但不要讓膜干燥,顯影液要現(xiàn)用現(xiàn)配。

    7、PVDF 膜上一抗二抗可以使用洗脫液洗脫,重新孵育一抗二抗。

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